组蛋白修饰被定义为表观遗传修饰。组蛋白翻译后修饰包括组蛋白乙酰转移酶(HATs)对特定赖氨酸残基的乙酰化，组蛋白去乙酰化酶(HDACs)对赖氨酸和精氨酸残基的甲基化，组蛋白去甲基化酶(HDMTs)对赖氨酸残基的甲基化，以及组蛋白激酶(HKs)对特定丝氨酸基团的磷酸化。其他组蛋白修饰包括连接泛素(Ub)、小泛素样修饰(SUMOs)和聚adp -核糖(PAR)单元。除DNA甲基化外，组蛋白乙酰化和组蛋白甲基化是最明显的表观遗传标记。通常，H3-K4、H3-K36或H3-K79的三甲基化会导致开放染色质构型，因此是常染色质的特征。常染色质还具有高水平的组蛋白乙酰化，这是由组蛋白乙酰转移酶介导的。相反，组蛋白去乙酰化酶有能力去除这种表观遗传标记，从而导致转录抑制。凝聚异染色质富含H3-K9和H3-K27的三甲基化，组蛋白去乙酰化引起的常染色质位点沉默涉及特异性K9组蛋白甲基转移酶的募集。甲基化的H3-K9为含染色质的异染色质蛋白1 (HP1)提供了一个结合位点，诱导转录抑制和异染色质化。在全染色位点，这一过程是由辅抑制因子介导的，如视网膜母细胞瘤蛋白pRb或KAP1。组蛋白去甲基化酶对转录有相反的作用。例如，组蛋白去甲基化酶LSD1负责H3K4去甲基化，从而导致转录失活。其他组蛋白去甲基化酶，如jumonji (JHDM2A)，负责H3K9去甲基化，而JHDM1有能力将活性染色质标记(如H3-K36me2)转化为未修饰状态。赖氨酸残基可以是单甲基化的、二甲基化的或三甲基化的，每一个都可以有差异地调控染色质结构和转录。随着其他组蛋白修饰，如磷酸化，这种巨大的变化导致了不同修饰可能组合的多样性。这可能构成了“组蛋白密码”，可以被不同的细胞因子读取和解释。

        合作开发的循环组蛋白H3修饰多重定量检测试剂盒（比色法）。这个工具可在一个微孔板中定量22种循环组蛋白H3的修饰类型，具有如下的优势和特性：

• 同时筛选和测量22种不同的组蛋白H3修饰，包括所有最重要和最典型的模式

  H3K4me1	H3K4me2	H3K4me3	H3K9me1	H3K9me2	H3K9me3
  H3K27me1	H3K27me2	H3K27me3	H3K36me1	H3K36me2	H3K36me3
  H3K79me1	H3K79me2	H3K79me3	H3K9ac	H3K14ac	H3K18ac
  H3K27ac	H3K56ac	H3ser10P	H3cit	Total H3

• 快速简便的操作流程，整个流程仅需2.5小时
• 不需要放射性、电泳、色谱或昂贵设备的创新比色分析
• 在血浆/血清的指示量范围内，每种修饰类型的检测限低至0.5 ng/孔，动态范围为1-20 ng/孔
• 包括总组蛋白H3组，可用于归一化总组蛋白H3水平，用于不同样本或不同处理条件下组蛋白H3含量的相对比较
• 条状微孔板设计使分析变得灵活：手动或高通量，可以在同一样品中分析单个修饰或共计22种修饰类型
• 试剂盒中附加2个8孔条，必要时可用于样品量预先优化，以确定输入量(例如:50、100、200 ng/孔)，以使其在检测限内。如果需要从22个组蛋白修饰类型中选择性检测某些组蛋白H3修饰，则可以使用额外条孔作为检测对照和总组蛋白水平控制
• 简单，可靠，一致的分析条件