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循环游离DNA提取试剂盒(磁珠法)
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循环游离DNA提取试剂盒(磁珠法)

循环游离DNA提取试剂盒(磁珠法)适用于从血浆和血清中快速的提取游离的循环DNA,后续非常适合做MS-PCR,实时定量 MS-PCR,DNA甲基化定量检测,DNA文库构建以及甲基化微阵列等下游实验分析。更多视频请关注视频号【艾维缔】。哔哩哔哩【IVDSHOW】。抖音【军哥聊表观】。
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产品描述
产品组分
文件资源
营销中心
注意事项
FAQ
文献追踪

    血浆/血清中循环DNA(ccfDNA)的表观遗传和遗传方面的分析或体液的分析提供了独特的早期检测大量临床样本比如:癌症、自身免疫疾病、胎儿感染和发挥失调的方法。论证得出,ccfDNA 的临床价值从单个核小体中分离的片段化的 170bps碱基具有很大意义;作为片段化的 360bps 的核小体碱基拥有相似的功能【1,2】。在细胞凋亡中这种核小体的混合物被释放到血液循环中。并增加尤其在各种各样的病理学情况中;比如:炎症、肺血栓、自身免疫疾病、和癌症【3,4】。同样给展示的使用来自核小体混合物的 ccfDNA 对于遗传和表观遗传的精确分析病理的和生理的状态提供了更好的方法和工具。

    目前,这里有几种从血浆和血清中提取ccfDNA的方法。所有的试剂盒都是通过硅胶柱结合或酚氯仿分离来获得DNA。用这种方法获得的DNA既包括ccfDNA又包含非-ccfDNA,这可能会严重影响下游实验的准确分析。为了就解决这些问题,我们研发部特别设计了这款:循环游离DNA提取试剂盒(磁珠法)来分离ccfDNA

        开发的循环游离DNA提取试剂盒(磁珠法)。是专门针对血清和血浆样本而设计的,具有如下的优势和特性:

特异性好:使用创新的磁珠片段分选技术,从血浆/血清中有效分离ccfDNA,主要片段大小在170bps。分离得到的DNA可以直接进行qPCRNGSDNA文库构建实验。
操作简便:快速简单的步骤仅需2小时。无需跑胶,过柱和离心操作。
高效纯化:高效移除蛋白、盐分、核酸酶、PCR抑制物质、和另外的杂质比如:多糖、多酚和脂肪。
高灵敏度:高效高敏感的DNA回收可以成功的回收大概>80%的单个核小体DNA,即使在起始材料有限的情况下。比如:低至0.1ml

高通量:手动和也可自动化操作,单管操作或96孔板操作都可扩展。

产品组分

组分内容

型号:A-P-1064-025(25)

型号:A-P-1064-050(50)

储存温度

CC1

ccfDNA Capture Beads

4 ml 8 ml 4°C
CC2 ccfDNA Capture Enhancer* 0.7 ml 1.4 ml 4°C
CC3 Capture Buffer 23 ml 46 ml 4°C
CC4 Digestion Solution 2 ml 4 ml 4°C
CC5

Proteinase K*

60 ul 120 ul 4°C
CC6 MQ Binding Beads 3 ml 6 ml 4°C
CC7 Elution Buffer 0.6 ml 1.2 ml 4°C

操作手册

 

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室温

*注意:在将离心柱放入微型离心机之前,始终将离心柱盖子旋紧盖严

营销中心

注意事项

保存建议 推荐蓝冰或冰袋运输。当您收到产品后,按照说明书建议保存各组分。
警告 本品仅供科研使用,请勿用于临床与诊断。

 

FAQ

Fang Y. et. al. (June 2020). The Standardization Process of cfDNA Research: A New Molecular Marker Journal of Clinical Cancer Research. 1(2):1-8.

Thakral D et. al. (June 2020). Cell-free DNA for genomic profiling and minimal residual disease monitoring in Myeloma- are we there yet? Am J Blood Res. 10(3):26-45.

Deans ZC et. al. (April 2019). IQN path ASBL report from the first European cfDNA consensus meeting: expert opinion on the minimal requirements for clinical ctDNA testing. Virchows Arch.

Martignano F et. al. (December 2018). Cell-Free DNA: An Overview of Sample Types and Isolation Procedures. Methods Mol Biol. 1909:13-27.

Fettke H et. al. (October 2018). Cell-free DNA in cancer: current insights Cellular Oncology. :43846.

R.M.Trigg et. al. (July 2018). Factors that influence quality and yield of circulating-free DNA: A systematic review of the methodology literature Heliyon. 4(7)

Whale AS et. al. (May 2018). Control Materials and Digital PCR Methods for Evaluation of Circulating Cell-Free DNA Extractions from Plasma. Methods Mol Biol. 1768:45-65.

M. Castiglia et. al. (July 2017). Technical Aspects for the Evaluation of Circulating Nucleic Acids (CNAs): Circulating Tumor DNA (ctDNA) and Circulating MicroRNAs Liquid Biopsy in Cancer Patients. CCPATH:55-60.

Strotman LN et. al. (June 2016). Liquid Biopsies in Oncology and the Current Regulatory Landscape. Mol Diagn Ther.

Yoshizaki A et. al. (November 2015). Nucleosome in patients with systemic sclerosis: possible association with immunological abnormalities via abnormal activation of T and B cells Ann Rheum Dis.

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